I collected at 1.0809A, which was the optimal wavelength for the beam at NSLS-X29.  I will model them as MSEs.  I guess the better question to ask is if I should be concerned with not having these negative peaks.  Will it negatively affect my R-work/R-free if I continue to work with the data that&#39;s not been scaled to keep F+/F- separate?<br>

<br>-Leigh<br><br><div class="gmail_quote">On Thu, May 7, 2009 at 3:10 PM, Nathaniel Echols <span dir="ltr">&lt;<a href="mailto:NEchols@lbl.gov">NEchols@lbl.gov</a>&gt;</span> wrote:<br><blockquote class="gmail_quote" style="border-left: 1px solid rgb(204, 204, 204); margin: 0pt 0pt 0pt 0.8ex; padding-left: 1ex;">

<div><div></div><div class="h5">On May 7, 2009, at 2:53 PM, Leigh Allen wrote:<br>
&gt; I&#39;m new to the world of x-ray crystallography.  I just solved my<br>
&gt; first SAD structure and I&#39;m on to the refinement stage.  The<br>
&gt; difference map generated by phenix.refine has really big positive<br>
&gt; peaks all around my MET residues.  If I switch the atoms to MSE,<br>
&gt; then I get large negative peaks.  Firstly, I&#39;m not sure if I&#39;m<br>
&gt; supposed to represent these residues as MET or MSE because it&#39;s a<br>
&gt; &quot;native,&quot; high resolution (1.85) dataset, but it the protein had MSE<br>
&gt; residues.  When scaling this data, I did not keep F(+) and F(-)<br>
&gt; separate.  The protein&#39;s phases were generated using SAD data to<br>
&gt; 2.7A, which using SHARP led to a remarkably interpretable map that<br>
&gt; allowed me to build in the protein by hand. My second question is,<br>
&gt; how should I handle the issue with large + MET/large - MSE peaks?<br>
&gt; Do I need to rescale my data to treat it as anomalous data or is<br>
&gt; there something I can do within Phenix to fix my problem.  I tried<br>
&gt; the phenix.refine GUI and set it up to refine f&#39; and f&quot;, but it<br>
&gt; appears that nothing really changed.<br>
<br>
</div></div>When you wrote &quot;native&quot;, do you mean collected at a wavelength<br>
significantly different than the Se K edge?  If it&#39;s a longer<br>
wavelength, there will be much less anomalous signal anyway.  However,<br>
without separate Friedel pairs I think it is impossible to tell, so if<br>
you want to refine the anomalous coefficients you should rescale with F<br>
+/F- kept separate.<br>
<br>
Regardless of the anomalous signal, if the protein contained Se you<br>
should model the METs as MSEs.  I think it&#39;s very common for these to<br>
have negative difference map peaks, because they&#39;ll undergo radiation<br>
damage very quickly relative to the rest of the protein.  If you<br>
collected the high-resolution data set solely to get high resolution<br>
and not phases, this is probably what happened, but I&#39;ve even seen the<br>
negative peaks around sites used for phasing in a low-exposure dataset.<br>
<br>
-Nat<br>
_______________________________________________<br>
phenixbb mailing list<br>
<a href="mailto:phenixbb@phenix-online.org">phenixbb@phenix-online.org</a><br>
<a href="http://www.phenix-online.org/mailman/listinfo/phenixbb" target="_blank">http://www.phenix-online.org/mailman/listinfo/phenixbb</a><br>
</blockquote></div><br>